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技術(shù)文獻(xiàn)

雙酶切連接反應(yīng)之全攻略
閱讀次數(shù):1423 發(fā)布時間:2022/12/27 10:21:10
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 在進(jìn)行PCR擴(kuò)增時候,給引物兩端設(shè)計好酶切位點(diǎn),一般說來,限制酶的 選擇非常重要,盡量選擇粘端酶切和 那些酶切效率高的限制酶,如BamHI、HindIII,提看好各公司的雙切酶所用公用的BUFFER,以及各酶在公用BUFFER里的效率。選好酶切位點(diǎn)后,在各個酶的兩邊加上保護(hù)堿基,其原則可參照此處。


雙酶切時間及其體系:需要強(qiáng)調(diào)的是很多人建議酶切過夜,其實(shí)wan全沒有必要,一般酶切3個小時,其實(shí)1個小時已經(jīng)足夠。應(yīng)用大體系,如100微升。

純化問題:純化PCR產(chǎn)物割膠還是柱式,我推薦柱式,因?yàn)楦钅z手法不準(zhǔn),很容易割下大塊的膠,影響純化效率,F(xiàn)在的柱式純化號稱可以祛除引物,既然如此,酶切掉的幾個堿基肯定也會被純化掉了。所以,PCR產(chǎn)物和雙酶切產(chǎn)物的純化均可應(yīng)用柱式純化。用的是TAKARA的純化柱試劑盒。酶量的問題:以TAKARA的為例,其對1單位酶的定義如下:在50 μl 反應(yīng)液中,30℃溫度下反應(yīng)1小時,將1 μg 的λDNAwan全分解的酶量定義為1個活性單位(U)。 而該酶濃度約為15單位/微升,在除外酶降解的 因素外,該酶可分解15 μg的DNA,而一般從1-4 ml菌液提出的 DNA約為3 μg,而PCR純化后的產(chǎn)物(50體系)約為3 μg,所以即便全部加進(jìn)去,只要純化的 質(zhì)量好,酶切wan全切得動。

1.  酶切、回收后的PCR產(chǎn)物與載體的連接

摩爾比的計算,很多人憑經(jīng)驗(yàn)也可以。但對于初學(xué)者從頭認(rèn)真計算則 非常有必要。回收的載體片段:回收的PCR產(chǎn)物片段=1:10 ,一般取者0.03 pmol,后者取0.3 pmol。

pmol為單位的DNA轉(zhuǎn)換為為μg單位的DNA:(X pmoles×長度bp×650)/ 1,000,000 (注:長度bp×650是該雙鏈DNA的分子量)所得數(shù)值即為μg,也可以直接用這個公式套.1 pmol 1000 bp DNA=0.66 μg,如載體是5380 bp,則0.03 pmol為

0.03×5.38×0.66=0.106524 μg。

測DNA濃度可以在用機(jī)子上測,注意OD值,一般約1.8-2.0,另外,如果嫌麻煩,也可用MARKER進(jìn)行估測,如MARKER2000,5微升的 MARKER每個條帶約50 ng。

連接反應(yīng):TAKARA的 連接酶上的 說明寫的過夜,而其對連接酶單位的定義為:在20 μl的連接反應(yīng)體系中,6 μg的λDNA-Hind III的分解物在16 ℃下反應(yīng)30分鐘時,有90%以上的DNA  p片段被連接所需要的酶量定義為1個活性單位(U)。而它的濃度為350 U/μl ,所以wan全夠用。連接酶容易失活,注意低溫操作,/好在冰上。時間3個小時足已。

2.  轉(zhuǎn)化

a.  全量(10 μl)加入至100 μl JM109感受態(tài)細(xì)胞中,冰中放置30分鐘。

b.  42 ℃加熱45鐘后,再在冰中放置1分鐘。

c.  加入890 μl AMP陰性培養(yǎng)基,37 ℃振蕩培養(yǎng)60分鐘。

取100 μl鋪板。也可離心后余100 μl。

幾個非常重要的問題

1.  做轉(zhuǎn)化的時候,進(jìn)行酶連接反應(yīng)時,注意保持低溫狀態(tài),因?yàn)長IGASE酶很容易降解,為保險起見,一般連接3小時,16度。

2.  對含有AMP-RESISTENCE的質(zhì)粒鋪板時,注意加AMP時的溫度,溫度過高,會使克隆株無法篩選出來.我的方法是培基高溫消毒后放在烤箱里,烤箱一般溫度為55-60度,然后做的時候拿出來,這樣好掌握溫度。鋪板后注意用吹風(fēng)機(jī)吹干。

3.  對照的設(shè)立:

為驗(yàn)證雙酶切是否成功,可做如下對照:

A 酶切反應(yīng)時加各單酶分別切,兩管,用同一種BUFFER,跑膠,看單切的兩管是否成線性,如兩管均成線性可初步判斷雙酶切成功。

做轉(zhuǎn)化時也要進(jìn)行對照。

設(shè)4個:

A.  即拿雙酶切的質(zhì)粒產(chǎn)物也進(jìn)行連接反應(yīng),這個對照可進(jìn)一步看雙酶切是否成功,如果長出克隆,說明很有可能只進(jìn)行了單酶切,如沒長出克隆,則證明雙酶切成功,當(dāng)然要保/證感受態(tài),培養(yǎng)基、連接酶都'正常'的情況下。

B.  酶切過的未進(jìn)行連接反應(yīng)的雙酶切產(chǎn)物,進(jìn)行轉(zhuǎn)化,這一步可以證明是否有殘留的未被任何酶切的原始質(zhì)粒。

C.  設(shè)原始質(zhì)粒為對照,意為檢測整個操作過程中是否有誤。

D.AMP陰性板上用同一批感受態(tài)細(xì)胞鋪板20微升足夠,檢測感受態(tài)狀況。

3.  所有的試劑切記低溫保存

一步一個腳印,不要偷懶,圖省事/后卻更費(fèi)事,注意設(shè)立對照。

經(jīng)PCR鑒定,克隆90%-100%的陽性率,所以在后面的 挑克隆中,我只挑選4個就足夠了。然后雙酶切鑒定,測序。

原創(chuàng)作者:上海遠(yuǎn)慕生物科技有限公司

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