一、實(shí)驗(yàn)的常用方法有直接法和間接法，方法的選擇是實(shí)驗(yàn)的步：
方法 直接法 間接法
步驟 將熒光標(biāo)記的特異性
抗體（抗原） 先用已知未標(biāo)記的特異性抗體（一抗） 直接加在抗原（抗體）上，經(jīng)一定 與抗原反應(yīng)，再用標(biāo)記的抗體（二抗）
的溫度和時(shí)間染色，水洗—干燥—封片—鏡檢 與其反應(yīng)，形成抗原—抗體—抗體復(fù)合物，
水洗—干燥—封片—鏡檢
優(yōu)點(diǎn) 操作簡(jiǎn)便、特異性高、非特異性染色少 敏感性強(qiáng)，目前多采用間接法
缺點(diǎn) 敏感性低 操作復(fù)雜
二、我們來(lái)看看實(shí)驗(yàn)的常見(jiàn)問(wèn)題：
1、整個(gè)
細(xì)胞片都出現(xiàn)熒光亮點(diǎn)？
答：原因有二：一是二抗?jié)舛冗^(guò)高，適當(dāng)降低二抗?jié)舛燃纯伞?br />
二是二抗發(fā)生沉淀，可以使用過(guò)濾或者離心熒光標(biāo)記二抗
2、信號(hào)弱或無(wú)信號(hào)，染色細(xì)胞過(guò)少？
原因 優(yōu)化方案目標(biāo)
蛋白在細(xì)胞中沒(méi)有表達(dá) 制備細(xì)胞裂解液，用Western Blotting驗(yàn)證目標(biāo)蛋白在細(xì)胞中是否表達(dá)
表達(dá)目標(biāo)蛋白的細(xì)胞過(guò)少 標(biāo)本中使用更多的細(xì)胞，試用其他瞬時(shí)轉(zhuǎn)染方法，或者使用穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞系
細(xì)胞通透性差 增加通透劑作用的時(shí)間或者濃度，或改用其它的通透劑
染色前的固定步驟破壞了抗原表位 改用其他固定方法
通透使抗原丟失 減少通透劑作用的時(shí)間或強(qiáng)度
抗體不識(shí)別 換用其他抗體
一抗稀釋度過(guò)大 同一樣品按*佳的二抗用量作一抗稀釋曲線，以確定*佳的一抗稀釋比例
二抗選擇錯(cuò)誤 使用正確的二抗
3、為什么我的鏡下觀察只有DAPI的藍(lán)光，目的熒光幾乎沒(méi)有或者很弱？
答：出現(xiàn)這種現(xiàn)象很有可能是抗體比例太低，需提高抗體濃度，可配合提高二抗?jié)舛�；共聚焦的激發(fā)熒光強(qiáng)度不夠大；二抗孵育時(shí)是否是對(duì)應(yīng)的種屬，比如本來(lái)需要山羊抗鼠結(jié)果加為山羊抗兔
4、為什么我的細(xì)胞核周圍總是存在有一些藍(lán)色的小點(diǎn)點(diǎn)？
答：此種情況一般是支原體污染所致，建議用殺支原體藥2周后再檢測(cè)，或者通過(guò)提高共聚焦機(jī)器背景值來(lái)覆蓋支原體熒光
5、共定位的視野該如何選擇？
答：共定位時(shí)，首先判斷哪些細(xì)胞是轉(zhuǎn)染成功的，比如我過(guò)表達(dá)了蛋白A，想做蛋白A和蛋白B的共定位關(guān)系，則在視野中尋找已成功轉(zhuǎn)染蛋白A的細(xì)胞，一般熒光強(qiáng)度會(huì)顯著高于周邊其他細(xì)胞，再在這個(gè)細(xì)胞上觀察蛋白B的表達(dá)，
6、視野中細(xì)胞與細(xì)胞之間存在散在的發(fā)光點(diǎn)。
答：有兩種情況可造成：1，拍照時(shí)PBS量過(guò)少引起的非特異性；2，PBS未過(guò)濾，未溶解的殘?jiān)じ蕉鴮?dǎo)致
三、除此之外，這些注意事項(xiàng)也要牢記
1、合適的抗體稀釋比例
通過(guò)優(yōu)化抗體稀釋比例來(lái)優(yōu)化染色，通常情況下1ug/ml的純化抗體或者1:100-1:1000的抗血清足夠達(dá)到特異性染色的結(jié)果。但在能保證低背景染色的前提下，可以通過(guò)增加濃度來(lái)提高信號(hào)強(qiáng)度。如果是次使用該抗體或測(cè)定某抗原，強(qiáng)烈建議濃度梯度實(shí)驗(yàn)。
2、抗體特異性
免疫熒光需要用到特異性非常強(qiáng)的抗體，可以避免高背景和不理想的蛋白定位結(jié)果。在大多數(shù)情況下，純化抗體的效果很好，但是正確的對(duì)照可以幫助精準(zhǔn)定位抗原。使用只有二抗染色的片子
3、細(xì)胞固定和通透
為達(dá)到*佳的檢測(cè)效果，細(xì)胞需要經(jīng)過(guò)固定和通透。這些步驟非常關(guān)鍵，細(xì)胞和抗原需要保證*佳的結(jié)構(gòu)，并利于抗體與抗原結(jié)合。通常情況下，需要通過(guò)以下步驟得以實(shí)現(xiàn)：細(xì)胞用2%-4%多聚甲醛固定，之后用0.1%皂角苷或0.02%的Triton X-100進(jìn)行通透。前者是比較溫柔的處理，但是對(duì)于核內(nèi)抗原可能無(wú)效，需要用到Triton。使用皂角苷進(jìn)行通透時(shí)，要注意它會(huì)引起細(xì)胞膜的可逆性通透，也就是除了在通透初期，在每個(gè)抗體孵育環(huán)節(jié)都需要進(jìn)行通透。另外，細(xì)胞可以用冰甲醇進(jìn)行同時(shí)固定和通透，可以避免去垢劑的使用。
4、封閉條件的優(yōu)化選擇
為了防止內(nèi)源性非特異性蛋白抗原的結(jié)合，需要在一抗孵育前用封閉液封閉，這樣可以減少非特異性的背景著色。封閉液可以選擇二抗來(lái)源一致的血清，一般來(lái)說(shuō)，血清價(jià)格比較昂貴，可以用1%-5%BSA替代，BSA可以說(shuō)是萬(wàn)能的封閉血清。另外封閉時(shí)間不易過(guò)長(zhǎng)，30-60min即可，且封閉后不用洗滌，直接加一抗孵育即可。
5、一抗二抗的選擇
封閉過(guò)后需要一抗孵育，可以選擇4度過(guò)夜孵育或者室溫3h，以筆者的經(jīng)驗(yàn)是一抗孵育4度過(guò)夜比較好，抗原抗體結(jié)合會(huì)比較充分。一抗二抗的稀釋比例可以根據(jù)抗體說(shuō)明書來(lái)，再根據(jù)自己具體的實(shí)驗(yàn)要求進(jìn)行優(yōu)化。如果抗體濃度過(guò)低，會(huì)造成信號(hào)太弱，如果抗體濃度過(guò)高可能會(huì)造成背景染色太強(qiáng)。熒光二抗個(gè)人感覺(jué)Alex flour熒光基團(tuán)信號(hào)強(qiáng)于Dylight強(qiáng)于FITC。如果做免疫雙標(biāo)，一抗要來(lái)自不同種屬，熒光二抗的光譜也要分開。
客服一
